Фрагмент документа "МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ. ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА ХОЛЕРЫ".
6.5. Тесты межвидовой дифференциации патогенных
для человека вибрионов
Определение галофильности вибрионов.
Суточную агаровую культуру исследуемого штамма засевают в
1-процентную пептонную воду с 3-процентным раствором натрия хлорида.
Через 3 - 4 ч инкубации при температуре (37,0 +/- 0,5) ёC переносят
строго по 1 капле выросшей культуры в пептонную воду без NaCl, с 7 и
10-процентным раствором натрия хлорида. Через 18 - 20 ч инкубации
оценивают рост культур по помутнению среды.
К негалофильным относятся V. cholerae и V. mimicus, для роста
которых достаточны следовые количества соли в среде. Вибрионы
остальных видов, за исключением некоторых штаммов V. fluvialis и V.
metshnikovii, не растут в 1-процентной пептонной воде без добавления
натрия хлорида и устойчивы к значительным его концентрациям.
Определение способности вибрионов к росту при разных
температурах.
Способность вибрионов к росту при температуре 4; 20; 30; 35; 40;
45 и 50 ёC выявляют при посеве суточных культур в 1-процентную
пептонную воду с 0,5% натрия хлорида для негалофильных вибрионов и с
1,5 - 2% натрия хлорида для галофильных вибрионов. Наличие роста
оценивают визуально в сравнении с контролем. Наблюдают за посевами
ежедневно в течение 2 недель.
Определение нитратредуктазы.
Суточную агаровую культуру засевают в 1 мл бульона Хоттингера с
0,1-процентного раствора азотно-кислого калия. После 2 суток инкубации
при температуре (37,0 +/- 0,5) ёC в посевы добавляют 0,5 мл реактива
Грисса. В положительных случаях среда сразу же окрашивается в красный
цвет.
К 1 - 2-суточной культуре в бульоне Хоттингера с 0,1% KNO3
добавляют 3 - 5 капель реактива, представляющего собой смесь равных
объемов 0,1% раствора риванола в дистиллированной воде и
12-процентного раствора соляной кислоты. В случае положительной
реакции бульон окрашивается в красный цвет.
Определение бета-галактозидазы.
Суточную агаровую культуру засевают на скошенную поверхность
агара, содержащего 10% лактозы. Посевы инкубируют 1 - 2 суток при
температуре (37,0 +/- 0,5) ёC. Петлю выросшей культуры суспендируют в
0,25 мл 0,9% раствора натрия хлорида, добавляют 0,25 мл водного
раствора О-нитрофенил-бета-D-галактопиранозита (ONPG) и помещают в
термостат при (37 +/- 0,5) ёC. Реакцию учитывают через 20 мин., 1, 3 и
24 ч. В положительном случае взвесь приобретает желтую окраску,
отрицательном - остается бесцветной.
|
Фрагмент документа "МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ. ЛАБОРАТОРНАЯ ДИАГНОСТИКА ХОЛЕРЫ".